实用器官移植电子杂志 ›› 2019, Vol. 7 ›› Issue (4): 277-282.DOI: 10.3969/j.issn.2095-5332.2019.04.007
厉小雪,李楚,任雪洋,王盈,杨海元,戴一凡
摘要:
目的 利用 CRISPR/Cas9 基因编辑技术建立巴马小型猪胚胎成纤维细胞(porcine fetalfibroblasts, PFFs)α-1,3- 半乳糖基转移酶(α-1,3-galactosyltransferase,GGTA1)/β-1,4 N- 乙酸氨基半乳糖转移酶(β-1,4 N-acetylgalactosaminyltransferase,β4GalNT2)双基因敲除细胞系,为构建 α-1,3- 半乳糖(α-1,3-galactose,α-Gal)和 SD(a)抗原缺失的巴马小型猪模型奠定基础。方法 分别选取猪 GGTA1 基因的第三外显子和 β4GalNT2 基因的第八外显子为敲除靶点,利用在线工具(http://crispr.mit.edu)设计并合成单导向 RNA(single guide RNA,sgRNA),以含有 Cas9 基因的 pX330 质粒为骨架构建打靶载体,转染野生巴马小型猪的 PFFs,用 T7EN1 酶切验证打靶载体敲除效率。将打靶载体与 G418 抗性质粒(tdTomato)共转染巴马小型猪 PFFs,经药物筛选获得阳性单细胞克隆后测序鉴定基因型。结果 成功构建靶向 GGTA1 和 β4GalNT2 基因的Cas9/sgRNA 表达载体。转染 PFFs 后用药物筛选得到 31 个单克隆细胞系,其中 5 个为 GGTA1/β4GalNT2 双基因敲除的细胞系。结论 Cas9/sgRNA 表达载体可以高效编辑PFFs 的 GGTA1/β4GalNT2 基因并获得了双基因敲除的单细胞克隆,为构建 GGTA1/β4GalNT2 敲除的巴马小型猪提供必需的实验材料。